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Posible identificación de la polilla

Posible identificación de la polilla


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Hay un insecto volador atrapado en el interior hoy en Sydney, Australia. Antes de ser capturado, básicamente vuela como una polilla. Sin embargo, buscar en Google Tiña pellionella y otras polillas de tela no sugieren que sea una polilla de tela ya que le falta pelo en su cabeza de tamaño muy pequeño.

También se sabe que es muy común todos los años cuando se acerca la primavera en Australia.

Para ayudar a la identificación, el insecto fue atrapado en un frasco de plástico para permitir fotografiar múltiples ángulos.

  • Longitud corporal medida (sin incluir antenas largas): 1,1 cm
  • Color: Marrón un marrón dorado con brillo.
  • Patas: 6 (el par delantero es muy corto, el par medio está bifurcado, las patas traseras tienen una estructura plumosa de color marrón dorado)
  • La cabeza es negra, muy pequeña y sin pelo.

  • Aquí se puede ver fácilmente que las patas traseras están cubiertas por algunas cerdas como estructuras plumosas de color marrón dorado, y también su abdomen segmentado y dorado brillante.

  • La cámara no es lo suficientemente rápida para capturarlo sin desenfocar cuando está volando, pero los pocos momentos en que abrió sus alas se pueden ver aquí extraídos de un video.

Y estas son nuestras mejores tomas con la cámara del iPhone para capturar su vuelo con las alas completamente abiertas.

¿Es este un tipo de polilla, es una plaga o es neutral? ¿Qué es la especie?


Este es un Bogong Moth, ¡el punto de migración fue realmente útil! Migran en masa alrededor del
1. Alpes victorianos
2. Australia meridional (Sydney, Canberra)
3. Nueva Zelanda ...
Agrotis infusa,
Son plagas que afectan a muchas plantas, no son neutrales y causan algún daño atento

Más sobre esto y el sitio que me ayudó


Posible identificación de la polilla - Biología

Lista de verificación de búsqueda de polillas de Carolina del Sur

Esta lista de verificación se deriva de una gran base de datos que contiene registros de varios museos, colecciones privadas, informes en línea, artículos de investigación y otras fuentes. Su objetivo es mostrar nuestro conocimiento actual de las especies de polillas que se han encontrado en Carolina del Sur, incluido el condado y la fecha de recolección u observación. Con esta información, uno puede comenzar a descubrir la distribución actual e histórica de una especie dentro del estado. También se puede determinar cuándo es probable que una especie esté "en vuelo" como adulta en el estado. Precaución: Las fuentes de información que se muestran aquí varían en la precisión de su contenido. Se supone que la identificación de las especies es correcta, pero es posible que algunas estén equivocadas. Si ve una identificación obviamente incorrecta, avíseme. Esta base de datos incluye actualmente 21,507 registros para 2,084 especies (actualizada por última vez el 4 de junio de 2021).

Lista de verificación compilada y mantenida por John Snyder en el Departamento de Biología de la Universidad Furman


Recolectando y preservando mariposas











Etapas inmaduras. Los huevos se pueden conservar en alcohol. Las orugas pueden matarse en un líquido conservante (es decir, KAAD) o hervirse (¡como camarones!) Y luego almacenarse en alcohol al 70% (para frotar). Las pupas se pueden conservar en alcohol, congelar y montar en un alfiler de insectos o, preferiblemente, se puede dejar que emerja la mariposa y luego se puede colocar la piel de la pupa debajo de la mariposa montada.

Recolectar, matar y almacenar especímenes. Después de atrapar una mariposa en una red aérea, la mejor manera de matarla es pellizcando su tórax (segmento medio del cuerpo) entre el pulgar y el índice. Esta técnica requiere algo de práctica para aprender la presión adecuada, pero aturdirá rápidamente a la muestra y evitará que se dañe. Con sus alas sobre su espalda, la muestra se puede deslizar en un sobre o en un triángulo de papel o sobre. Las muestras se pueden mantener en esta condición por tiempo indefinido en una caja hermética con bolas de polilla u otro insecticida, hasta que estén & # 8220 relajadas & # 8221 para el montaje. Alternativamente, las muestras recién recolectadas se pueden almacenar en una bolsa de plástico en un congelador hasta que estén montadas, eliminando la necesidad de & # 8220relajar & # 8221 la muestra antes del montaje.

& # 8220 Relajantes & # 8221 muestras secas. Una vez que los insectos mueren, se vuelven extremadamente frágiles. Sin embargo, las muestras secas siempre se pueden relajar y montar en cualquier posición deseada. Las cámaras de relajación se pueden hacer con frascos o cajas de plástico. Coloque un pedazo de papel toalla doblado en la parte inferior y humedezca con agua. Para evitar que el moho crezca en las muestras, agregue un antiséptico (el clorocresol o el líquido relajante Glanz de Bryanston Corp. se venden a través de catálogos de suministros químicos y entomológicos, pero Lysol® también puede funcionar). En el recipiente cerrado, la alta humedad & # 8220 relajar & # 8221 la muestra con el tiempo (2 días para muestras pequeñas y de 5 a 7 días para muestras más grandes).

Fijación de la muestra. Después de relajar la muestra, sáquela de su sobre con cuidado. Sosteniendo el espécimen por el tórax, fuerce un alfiler de insecto a través del medio del tórax (segmento medio del cuerpo) entre las alas. Las alas se pueden forzar hacia atrás para insertar el pasador lo suficiente a través del cuerpo. Después de inmovilizar, es útil forzar las alas hacia abajo con unas pinzas. Este paso hace que la muestra sea más fácil de manipular una vez que se coloca en la placa de montaje. Luego, fije la muestra en la placa de montaje, asegurándose de mantener el lado de la mariposa, donde las alas están articuladas al cuerpo justo por encima de la superficie de la placa de montaje.

Montaje de alas, cuerpo y antenas. Cuando la muestra se ha colocado correctamente en la placa de montaje, las alas se pueden plegar con tiras de papel y alfileres. Evite tocar las superficies de las alas con los dedos, ya que se desprenderían de las escamas. Una vez que ambos pares de alas estén clavados debajo de las tiras de papel, use alfileres de insectos para tirar de las alas delanteras hacia adelante individualmente, alternativamente o ambos al mismo tiempo para evitar torcer el cuerpo alrededor del alfiler. Asegúrese de insertar solo alfileres en las alas justo detrás de las venas de las alas más grandes para no rasgar las alas. Mueva las alas delanteras hacia adelante lo suficiente para que sus márgenes posteriores formen una línea casi recta. Mueva las alas traseras hacia adelante debajo de las alas delanteras para que coincidan con los patrones de color. A continuación, preste atención a las antenas y el abdomen, fijándolos en sus posiciones adecuadas. Verifique la posición general de la muestra y haga los ajustes necesarios antes de mover las clavijas desde los extremos de las tiras de papel hasta justo fuera de los márgenes de las alas, apretando las tiras de papel en el proceso. Coloque trozos de papel más anchos en el resto de la superficie expuesta del ala para evitar que se doblen. El tiempo de secado suele ser de varios días a una semana y dependerá del tamaño de la muestra, la temperatura y la humedad. Una vez que la muestra esté seca, retire con cuidado los alfileres y deseche las tiras de papel.

Nota para la preparación de muestras para su uso en pantallas de domo y shadowbox: Al hacer placas de montaje de madera de balsa con un ángulo de 90 a 45 grados entre las superficies de montaje, las muestras se pueden montar para exhibir en un domo en una posición más natural. Sin embargo, solo las muestras con alfileres que se hayan almacenado secas, ya que las clavijas de insectos no se pueden quitar fácilmente de las muestras recién sacrificadas y montadas. Después de secar la muestra, frote los pelos y retire las patas necesarias para pegar la muestra en la tela de fondo u objeto en la pantalla y retire el alfiler.

Almacenamiento de muestras montadas. Mantenga las muestras montadas en cajas bien cerradas. Si las muestras deben almacenarse durante períodos prolongados en condiciones de oscuridad, agregue bolas de polilla, cristales de paradiclorobenceno u otro insecticida registrado para evitar que los escarabajos derméstidos (de las alfombras) y los piojos de los libros se alimenten de las partes del cuerpo (nota: las bolas de polilla derretirán la espuma de poliestireno). Si las muestras se mantienen en condiciones de iluminación, como en marcos de vidrio o cúpulas, generalmente no se necesitan insecticidas, ya que a los insectos que se alimentan de insectos muertos (piojos de los libros, dermestidos o escarabajos de las alfombras) no les gusta la luz. Sin embargo, manténgalos alejados de la luz solar directa para evitar la decoloración de los colores de los pigmentos. Mantenga siempre las muestras en condiciones de baja humedad para evitar que el moho crezca en los cuerpos de las muestras y # 8217. Si se almacenan correctamente, las muestras durarán años y años.


Las polillas a menudo se malinterpretan, pero desempeñan funciones vitales en el ecosistema de la vida silvestre.

Aunque mucha gente las pasa por alto, las polillas son numerosas y están muy extendidas, con más de 2.500 especies en Gran Bretaña viviendo en una amplia gama de hábitats.

Desde 1914 ha habido 56 extinciones de polillas. Seis de ellos se han vuelto a colonizar o se han vuelto a encontrar.

La abundancia de las polillas más grandes del Reino Unido se ha desplomado durante los últimos 40 años y tres especies se han extinguido desde 2000.

El Informe sobre polillas más grandes del estado de Gran Bretaña de 2013 encontró que dos tercios de las especies más grandes comunes y generalizadas (macro-polillas) disminuyeron en los últimos 40 años. Las pérdidas en abundancia fueron mucho mayores en la mitad sur de Gran Bretaña que en el norte.


& # x27Es tremendamente tedioso & # x27

Para concentrarse en el gen detrás de este llamado & quot; melanismo industrial & quot ;, el equipo del Dr. Saccheri & # x27s comenzó con el mapeo genético tradicional. Cruzaron polillas negras y pálidas en el laboratorio y rastrearon qué "marcadores" genéticos, punteados a lo largo de cada cromosoma, parecían estar relacionados con la coloración negra.

Esto centró su atención en un tramo del genoma de la polilla que contiene 400.000 bases, los enlaces individuales en la cadena de ADN.

“Sabíamos que dentro de esas 400.000 bases, había alguna secuencia que tenía que hacerlo. causan la diferencia real entre el tipo negro y el tipo típico ", explicó el Dr. Saccheri.

"Así que realizamos un proceso insoportablemente tedioso de identificar cada una de las diferencias entre los dos tipos".

Una vez que hubo una lista final de 87 diferencias de ADN entre las polillas de laboratorio negras y pálidas, él y sus colegas probaron si cada variación, una por una, estaba presente en la variedad más amplia de polillas blancas que se encuentran en la naturaleza.

“Después de mucho tiempo, finalmente logramos bajar a uno solo, que luego tenía que ser la mutación causal. Para nuestra sorpresa, también resultó ser un tipo de mutación bastante inusual.

La mutación de carbonaria era de hecho un fragmento de ADN que "saltaba", llamado transposón, que se había insertado en un gen llamado corteza.

Estas secuencias extrañas suelen tener un efecto dañino cuando alteran un gen existente. Pero para una polilla embrionaria a principios del siglo XIX, cuando estas 9.000 bases adicionales aterrizaron en su corteza gen, eran de hecho el secreto del éxito.

Exactamente cómo la mutación causa la coloración negra sigue siendo un misterio corteza no es un gen con ningún papel conocido en la pigmentación.

Pero con un poco más de investigación genética, el equipo logró estimar cuándo probablemente nació esa primera polilla afortunada. Utilizaron el hecho de que el genoma, con el tiempo, se revuelve a medida que las piezas cambian entre los cromosomas en un proceso llamado "combinación". Una mirada de cerca a los tramos justo al lado del corteza la mutación mostró muy poca alteración. Este fue un evento reciente.

"Puede tomar una muestra de cromosomas en la población actual, identificar toda la variación de secuencia alrededor de la mutación e inferir ... el número de generaciones que tomaría para que ocurra esa cantidad de codificación en la secuencia de flanqueo", explicó el Dr. Sacchieri.

Específicamente, estiman que el salto del ADN ocurrió en una ventana de 10 años centrada en 1819, una fecha que encaja perfectamente con una propagación gradual de la mutación a través de la población, hasta que se detectaron las polillas negras por primera vez en 1848.


Polillas

Dwight Sipler / Flickr / CC BY 2.0

Las mariposas parecen obtener la mayor parte del crédito como polinizadores, pero las polillas también hacen su parte de transportar polen entre las flores. La mayoría de las polillas son nocturnas. Estos polinizadores que vuelan de noche tienden a visitar flores blancas y fragantes, como el jazmín.

Las polillas halcón y esfinge son quizás los polinizadores de polillas más visibles. Muchos jardineros están familiarizados con la vista de una polilla colibrí flotando y lanzándose de flor en flor. Otros polinizadores de polillas incluyen polillas mochuelos, polillas subalares y polillas geómetras.

El naturalista y biólogo Charles Darwin planteó la hipótesis de que una orquídea cometa, también conocida como Angraecum sesquipedale tiene un nectario excepcionalmente largo (la parte de la flor que secreta néctar) y requeriría la ayuda de una polilla con una probóscide igualmente larga. Darwin fue objeto de burla por su hipótesis, pero se demostró que estaba en lo cierto cuando una polilla halcón (Xanthopan morganii) fue descubierto usando su probóscide de un pie de largo para sorber el néctar de la planta.

Quizás el ejemplo más conocido de una planta polinizada por polillas es la planta de yuca, que requiere la ayuda de las polillas de la yuca para polinizar sus flores. La polilla de la yuca hembra deposita sus huevos dentro de las cámaras de la flor. Luego, recolecta polen de la cámara de polen de la planta, lo forma en una bola y coloca el polen en la cámara de estigma de la flor, polinizando así la planta. La flor polinizada ahora puede producir semillas, que llega cuando las larvas de la polilla de la yuca eclosionan y necesitan alimentarse de ellas.


Por que importa

“Hay motivos para preocuparse”, dice el autor principal Francisco Sánchez-Bayo, investigador de la Universidad de Sydney en Australia. "Si no lo detenemos, ecosistemas enteros colapsarán debido al hambre".

El documento, la primera encuesta global de investigación sobre poblaciones de insectos en todo el mundo, destaca algunos grupos de bichos que están particularmente amenazados: polillas y mariposas, polinizadores como abejas y escarabajos peloteros, junto con otros insectos que ayudan a descomponer las heces y los detritos. (Relacionado: sin errores, todos podríamos estar muertos).

El estudio sigue a varios artículos de alto perfil sobre la disminución de insectos que sorprendieron incluso a los expertos en el campo. En octubre de 2017, un grupo de investigadores europeos descubrió que la abundancia de insectos (medida por la biomasa) había disminuido en más del 75 por ciento en 63 áreas protegidas en Alemania, en el transcurso de solo 27 años.

Un año después, dos investigadores publicaron un artículo en el procedimientos de la Academia Nacional de Ciencias lo que sugiere que dentro de una selva tropical relativamente prístina en Puerto Rico, la biomasa de insectos y otros artrópodos como las arañas se había reducido entre 10 y 60 veces desde la década de 1970.

La mayoría de los datos relevantes provienen de Europa y, en menor medida, de Estados Unidos, pero el resto del mundo sigue siendo lamentablemente poco estudiado, dice David Wagner, ecologista de la Universidad de Connecticut que no participó en el artículo.

El estudio encontró que la mitad de las especies de polillas y mariposas estudiadas están en declive, con un tercio en peligro de extinción, y el número de escarabajos es casi exactamente el mismo. Mientras tanto, casi la mitad de las abejas y hormigas encuestadas están amenazadas. Las moscas caddis se encuentran entre las más desfavorecidas: el 63 por ciento de las especies están amenazadas, probablemente debido en parte al hecho de que ponen sus huevos en el agua, lo que las hace más vulnerables a la contaminación y el desarrollo.


Cómo identificar una termita

Hussam Bin Break es coautor (a) de este artículo. Hussam Bin Break es un aplicador comercial de pesticidas certificado y gerente de operaciones en Diagno Pest Control. Hussam y su hermano poseen y operan Diagno Pest Control en el área metropolitana de Filadelfia.

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Las termitas pueden causar daños estructurales importantes a las casas y otros edificios, así como a los muebles de madera. Por lo general, las personas solo ven termitas adentro cuando una infestación ya está bien establecida, aunque también puede encontrar termitas afuera alrededor de tocones de árboles muertos, tablas podridas u otros detritos. Para identificar una termita, examine un solo error con cuidado. Cosas como las alas y las antenas pueden ayudarlo a identificar un insecto como una termita. También debe buscar signos de una infestación, como tubos de lodo y excrementos. Si tiene una infestación de termitas, consulte a un profesional para recibir tratamiento.


Posible identificación de la polilla - Biología

Una mariposa es un insecto del orden Lepidoptera. El concepto de mariposas, incluida la Hedyloidea, se ha ampliado recientemente, pero convierte al grupo en un clado natural, las Rhopalocera. Las mariposas se destacan por su ciclo de vida inusual con una etapa de oruga larvaria, una etapa de pupa inactiva y una metamorfosis espectacular en una forma adulta alada familiar y colorida, y la mayoría de las especies que vuelan durante el día atraen regularmente la atención. Los diversos patrones formados por sus alas de colores brillantes y su vuelo errático pero elegante han convertido la observación de mariposas en un pasatiempo popular.

Las mariposas se caracterizan por sus alas cubiertas de escamas. La coloración de las alas de las mariposas se crea mediante escamas diminutas. Estas escamas están pigmentadas con melaninas que les dan negros y marrones, pero los azules, verdes, rojos e iridiscencias generalmente no son creados por pigmentos sino por la microestructura de las escamas. Esta coloración estructural es el resultado de la dispersión coherente de la luz por la naturaleza cristalina fotónica de las escamas.

Las mariposas probablemente se originaron en el Cretácico cuando los continentes eran diferentes con climas diferentes a los de hoy. Fue entonces cuando tuvo lugar la mayor radiación de angiospermas. La evidencia se obtiene de la paleontología donde se han identificado más de 50 fósiles de mariposas, de la morfología y el estudio de homologías, de la genética molecular y la bioquímica comparada, de la etología comparada y de las distribuciones geográficas y ecológicas actuales. Los investigadores que aceptan un origen cretáceo para las mariposas generalmente favorecen la hipótesis zoogeográfica vicariante de cómo los principales linajes de mariposas llegaron a distribuirse por el mundo, mientras que aquellos que favorecen una edad terciaria se basan en hipótesis dispersalistas. Algunas especies de Satyrinae usan helechos como plantas hospedantes larvarias, y es posible que las mariposas se originaran antes que las plantas hospedadoras angiospermas actuales. El estudio moderno de la clasificación superior de las mariposas comenzó con el uso fenético de Ehrlich de cientos de caracteres morfológicos previamente pasados ​​por alto en forma tabular, en familias y grupos principales. Scoble (1995) y otros continuaron la búsqueda de nuevos personajes, pero con su aplicación al cladismo. Los caracteres lavrales ahora se integran comúnmente con los de las mariposas adultas.


Anales de biología aplicada

Anales de biología aplicada publica artículos de investigación originales sobre todos los aspectos de la investigación aplicada sobre la producción de cultivos, la protección de cultivos y el ecosistema de cultivo, el manejo integrado de plagas, la salud y el bienestar de los animales, incluida la interacción con la vida silvestre y los animales y aves de las tierras de cultivo. La revista contribuye sustancialmente al avance del conocimiento y puede, entre otras, abarcar las disciplinas científicas de:

Agronomía | Ciencias agroambientales | Salud y bienestar de los animales, incluida la interacción con los animales silvestres y de las tierras de cultivo | Genómica aplicada | Biodiversidad | Control biológico | Bioplaguicidas | Aves en la agricultura | Cambio climático | Ecosistema de cultivo | Entomología | Silvicultura | Manipulación genética | Manejo Integrado de Plagas | Micología | Nematología | Plagas | Aplicación de plaguicidas | Patología vegetal | Mejoramiento y genética de plantas | Fisiología vegetal | Biología poscosecha | Ciencia del suelo | Virología | Biología de malezas

Conozca al nuevo editor en jefe de Annals of Applied Biology: Ricardo Antunes Azevedo

Ricardo A. Azevedo es profesor de Genética y Biología Celular en el Departamento de Genética de la Escola Superior de Agricultura Luiz de Queiroz (ESALQ), Universidad de São Paulo (USP), Brasil. Obtuvo su doctorado en 1992 de la Universidad de Lancaster, Lancaster, Reino Unido, donde también realizó estudios posdoctorales entre 1996 y 1997. Es miembro de la Academia de Ciencias del Estado de São Paulo, la Academia de Ciencias de Brasil y la Academia Mundial de Ciencias ( TWAS). Ricardo supervisó más de 70 Maestría en Ciencias y Ph.D. estudiantes y becarios postdoctorales. Ricardo ha ocupado cargos como coordinador de dos programas de posgrado, otros cargos administrativos en la USP y miembro del Comité Asesor de Botánica del Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico (CNPq), miembro del Comité Internacional de la Facultad de Ciencias Agrobiotécnicas, Universidad Josip Juraj Strossmayer de Osijek, Croacia, entre otros. Ricardo está fuertemente involucrado con la edición científica y ha estado en el Consejo Editorial de varias revistas desde 2001. Ha sido Editor Senior (Mejoramiento de Cultivos) para Annals of Applied Biology desde 2007 y fue uno de los editores que lanzó el Food and Energy Security (Wiley) Revista de acceso abierto en 2012.

El interés y las actividades de investigación de Ricardo se centran en el metabolismo de los aminoácidos en las plantas y en el estudio del estrés inducido por metales pesados ​​en las plantas. La identificación de enzimas clave y su regulación en el control del metabolismo de aminoácidos en cultivos de cereales, incluido el trabajo pionero sobre el aislamiento y caracterización de un polipéptido bifuncional involucrado en el control general de la vía metabólica del aspartato en plantas, e información clave sobre la Las respuestas enzimáticas de las plantas al estrés oxidativo inducido por metales pesados ​​se encuentran entre algunos de los resultados clave obtenidos. Ricardo ha jugado un papel importante en el avance de la publicación científica en Brasil con su papel como Vicepresidente de la Asociación Brasileña de Editores Científicos (ABEC) y dando más de 100 conferencias sobre publicaciones científicas, particularmente sobre el papel de los editores y las cuestiones éticas. Ricardo se ha desempeñado como revisor de numerosas agencias y organizaciones de financiación internacionales y de más de 220 revistas científicas, y ha publicado más de 200 artículos científicos.


Ver el vídeo: ELIMINAR LAS POLILLAS DE ALACENA. Delete the moths of cupboard (Febrero 2023).