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¿Qué pez es este?

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Estaba buceando en Biscayne Bay en Miami, Florida, en las aguas poco profundas cerca de la costa cuando vi este pez.

¿Qué pez es este?

Veo que tiene manchas negras en la parte inferior y cinco líneas blancas a lo largo de su aleta posterior.


Creo que este es probablemente un globo a cuadros. Sphoeroides testudineus según su ubicación e imagen, con el patrón de reflexión de ondas en la superficie dorsal y el moteado ventral las características más obvias.

(imagen de https://biogeodb.stri.si.edu/caribbean/en/thefishes/species/4403)

Podría ser diferente Sphoeroides, pero miré a través de otras especies encontradas en Florida y ninguna tenía un patrón similar.


12.11: Evolución y ecología de los peces

  • Contribuido por CK-12: Conceptos de biología
  • Procedente de la Fundación CK-12

¿Existen realmente ecosistemas en el océano?

Existen. Diferentes tipos de peces viven en diferentes tipos de ecosistemas. Arriba se muestran peces tropicales en un ecosistema de arrecifes de coral. Algunos peces viven en las profundidades del océano, mientras que otros viven en aguas poco profundas. Es posible que otros peces no puedan sobrevivir en el océano, ya que necesitan agua dulce.


¡Datos divertidos sobre los peces de rayos X!

La rápida tasa de reproducción y la apariencia única de los peces de rayos X lo convierten en una de las especies de acuarios más populares del mundo. Sin embargo, hay más datos divertidos y conceptos biológicos interesantes para explorar con esta especie además de su famosa piel translúcida.

El aparato weberiano

Una de las características más fascinantes de este pequeño pez es una estructura ósea dentro de su cuerpo conocida como aparato weberiano. Esta estructura única se ve en otras especies relacionadas y permite que las ondas sonoras se conduzcan a través de sus vértebras y, por lo tanto, las detecte el oído interno. Dependiendo de la especie, el aparato weberiano generalmente consta de dos partes: una parte móvil, conocida como pars auditum o huesecillos weberianos, y una estructura de soporte, conocida como el pars sustentaculum, varias vértebras anteriores modificadas de forma única. En combinación con el aire en su vejiga natatoria, esta estructura única permite a los peces de rayos X una excelente audición que puede ayudar a evitar a los depredadores así como a detectar presas.

Capa de invisibilidad

El pez de rayos X es conocido por su piel translúcida, de ahí su nombre común. Pero al igual que muchas características morfológicas, ha evolucionado para cumplir un propósito específico. En este caso, probablemente actúa como una forma de evitar a los depredadores, ya que los hace más difíciles de detectar por la mayoría de sus depredadores. Esto se debe no solo a la translucidez de su piel, sino también a la forma en que refleja la luz, brillando de forma muy parecida al medio acuático en el que se encuentra. Esto, combinado con sus distintivas marcas amarillas, negras y blancas en algunas de sus aletas, los hace difíciles de detectar, particularmente entre los pastos y otra vegetación en el fondo de los cuerpos de agua que normalmente habitan.

El viajero del mundo

Los tetras son una especie muy común en los acuarios. Algunos tienen características únicas como rayas iridiscentes & # 8216neon & # 8217 en sus flancos. Otros, como los peces de rayos X, son conocidos por su piel translúcida. Además, tienen una tasa de productividad muy alta. También son relativamente longevos y duraderos. Siempre que se les proporcione una pecera de buen tamaño con una falta de especies depredadoras y algunas otras con las que ir a la escuela, pueden vivir hasta 8 años con un cuidado y atención mínimos. De esta manera, este pequeño pez originario de arroyos y marismas en la costa de Sudamérica ha podido encontrar su camino alrededor del mundo.


Contenido

En biología, una sonda es una hebra única de ADN o ARN que es complementaria a una secuencia de nucleótidos de interés.

Las sondas de ARN se pueden diseñar para cualquier gen o cualquier secuencia dentro de un gen para la visualización de ARNm, [3] [4] [5] ARNc [6] [7] [8] y miARN en tejidos y células. FISH se utiliza examinando el ciclo de reproducción celular, específicamente la interfase de los núcleos en busca de anomalías cromosómicas. [9] FISH permite el análisis de una gran serie de casos de archivo mucho más fácil de identificar el cromosoma identificado mediante la creación de una sonda con una base cromosómica artificial que atraerá cromosomas similares. [9] Las señales de hibridación para cada sonda cuando se detecta una anomalía nucleica. [9] Cada sonda para la detección de mRNA e lncRNA se compone de

20 a 50 pares de oligonucleótidos, cada par cubre un espacio de 40 a 50 pb. Los detalles dependen de la técnica FISH específica utilizada. Para la detección de miARN, las sondas utilizan una química patentada para la detección específica de miARN y cubren toda la secuencia de miARN.

Las sondas a menudo se derivan de fragmentos de ADN que se aislaron, purificaron y amplificaron para su uso en el Proyecto Genoma Humano. El tamaño del genoma humano es tan grande, en comparación con la longitud que podría secuenciarse directamente, que fue necesario dividir el genoma en fragmentos. (En el análisis final, estos fragmentos se ordenaron digiriendo una copia de cada fragmento en fragmentos aún más pequeños usando endonucleasas específicas de secuencia, midiendo el tamaño de cada fragmento pequeño usando cromatografía de exclusión por tamaño y usando esa información para determinar dónde los fragmentos grandes se superponen entre sí.) Para preservar los fragmentos con sus secuencias de ADN individuales, los fragmentos se agregaron a un sistema de poblaciones de bacterias que se replican continuamente. Las poblaciones clonales de bacterias, cada una de las cuales mantiene un solo cromosoma artificial, se almacenan en varios laboratorios de todo el mundo. Los cromosomas artificiales (BAC) se pueden cultivar, extraer y etiquetar en cualquier laboratorio que contenga una biblioteca. Las bibliotecas genómicas a menudo reciben el nombre de la institución en la que se desarrollaron. Un ejemplo es la biblioteca RPCI-11, que lleva el nombre del Roswell Park Comprehensive Cancer Center (anteriormente conocido como Roswell Park Cancer Institute) en Buffalo, Nueva York. Estos fragmentos son del orden de 100 mil pares de bases y son la base de la mayoría de las sondas FISH.

Proceso de preparación e hibridación - RNA Edit

Las células, las células tumorales circulantes (CTC) o las secciones de tejido congeladas e incluidas en parafina fijadas con formalina (FFPE) o congeladas se fijan y luego se permeabilizan para permitir la accesibilidad del objetivo. FISH también se ha realizado con éxito en células no fijadas. [10] Una sonda específica de la diana, compuesta por 20 pares de oligonucleótidos, se hibrida con los ARN diana. Los sistemas de amplificación de señales separados pero compatibles permiten el ensayo multiplex (hasta dos dianas por ensayo). La amplificación de la señal se logra mediante una serie de pasos de hibridación secuenciales. Al final del ensayo, las muestras de tejido se visualizan bajo un microscopio de fluorescencia.

Proceso de preparación e hibridación - DNA Edit

Primero, se construye una sonda. La sonda debe ser lo suficientemente grande para hibridar específicamente con su objetivo, pero no tanto como para impedir el proceso de hibridación. La sonda se marca directamente con fluoróforos, con dianas para anticuerpos o con biotina. El marcado se puede realizar de varias formas, como traducción de muescas o reacción en cadena de la polimerasa utilizando nucleótidos marcados.

Luego, se produce una preparación de cromosomas en interfase o metafase. Los cromosomas están firmemente adheridos a un sustrato, generalmente vidrio. Las secuencias de ADN repetitivas deben bloquearse agregando fragmentos cortos de ADN a la muestra. Luego, la sonda se aplica al ADN del cromosoma y se incuba durante aproximadamente 12 horas mientras se hibrida. Varios pasos de lavado eliminan todas las sondas sin hibridar o parcialmente hibridadas. Luego, los resultados se visualizan y cuantifican utilizando un microscopio que es capaz de excitar el tinte y registrar imágenes.

Si la señal fluorescente es débil, puede ser necesaria la amplificación de la señal para superar el umbral de detección del microscopio. La intensidad de la señal fluorescente depende de muchos factores, como la eficacia del etiquetado de la sonda, el tipo de sonda y el tipo de tinte. Los anticuerpos marcados con fluorescencia o la estreptavidina se unen a la molécula de colorante. Estos componentes secundarios se seleccionan para que tengan una señal fuerte.

FISH es una técnica muy general. Las diferencias entre las diversas técnicas de FISH se deben normalmente a variaciones en la secuencia y el etiquetado de las sondas y a cómo se utilizan en combinación. Las sondas se dividen en dos categorías genéricas: celulares y acelulares. En la hibridación fluorescente "in situ" se refiere a la colocación celular de la sonda.

El tamaño de la sonda es importante porque las sondas más largas se hibridan de manera menos específica que las sondas más cortas, por lo que a menudo se utilizan cadenas cortas de ADN o ARN (a menudo de 10 a 25 nucleótidos) que son complementarias a una secuencia diana determinada para localizar una diana. La superposición define la resolución de características detectables. Por ejemplo, si el objetivo de un experimento es detectar el punto de ruptura de una translocación, entonces la superposición de las sondas (el grado en que una secuencia de ADN está contenida en las sondas adyacentes) define la ventana mínima en la que se puede detectar el punto de ruptura. .

La mezcla de secuencias de sondas determina el tipo de característica que la sonda puede detectar. Las sondas que se hibridan a lo largo de un cromosoma completo se utilizan para contar el número de un determinado cromosoma, mostrar translocaciones o identificar fragmentos extracromosómicos de cromatina. Esto a menudo se denomina "pintura de cromosomas completos". Si se utilizan todas las sondas posibles, cada cromosoma (el genoma completo) se marcaría con fluorescencia, lo que no sería particularmente útil para determinar características de secuencias individuales. Sin embargo, es posible crear una mezcla de sondas más pequeñas que sean específicas de una región particular (locus) de ADN. Estas mezclas se utilizan para detectar mutaciones por deleción. Cuando se combina con un color específico, se usa una mezcla de sondas específicas de locus para detectar translocaciones muy específicas. Las mezclas especiales de sondas específicas de locus se utilizan a menudo para contar cromosomas, uniéndose a las regiones centroméricas de los cromosomas, que son lo suficientemente distintivas como para identificar cada cromosoma (con la excepción del cromosoma 13, 14, 21, 22).

Una variedad de otras técnicas utiliza mezclas de sondas de diferentes colores. Se puede detectar una gama de colores en mezclas de tintes fluorescentes, por lo que cada cromosoma humano se puede identificar por un color característico utilizando mezclas de sondas de cromosomas completos y una variedad de proporciones de colores. Aunque hay más cromosomas que colores de tintes fluorescentes fácilmente distinguibles, se pueden utilizar proporciones de mezclas de sondas para crear secundario colores. De manera similar a la hibridación genómica comparativa, la mezcla de sondas para los colores secundarios se crea mezclando la proporción correcta de dos conjuntos de sondas de diferentes colores para el mismo cromosoma. Esta técnica a veces se llama M-FISH.

La misma física que hace posible una variedad de colores para M-FISH se puede utilizar para la detección de translocaciones. Es decir, los colores que son adyacentes parecen superponerse a un color secundario. Algunos ensayos están diseñados para que el color secundario esté presente o ausente en los casos de interés. Un ejemplo es la detección de translocaciones BCR / ABL, donde el color secundario indica enfermedad. Esta variación a menudo se denomina FISH de doble fusión o D-FISH. En la situación opuesta, donde la ausencia del color secundario es patológica, se ilustra con un ensayo utilizado para investigar translocaciones en las que solo uno de los puntos de corte es conocido o constante. Las sondas específicas de locus se fabrican para un lado del punto de ruptura y el otro cromosoma intacto. En las células normales, se observa el color secundario, pero solo se observan los colores primarios cuando se produce la translocación. Esta técnica a veces se denomina "PESCADO de separación".

FISH de ARN de molécula única Editar

FISH de ARN de molécula única, también conocido como Stellaris® RNA FISH, [11] es un método para detectar y cuantificar ARNm y otras moléculas largas de ARN en una capa delgada de muestra de tejido. Se pueden obtener imágenes de los objetivos de forma fiable mediante la aplicación de múltiples sondas oligonucleotídicas cortas marcadas individualmente. [12] La unión de hasta 48 oligos marcados con fluorescencia a una sola molécula de ARNm proporciona suficiente fluorescencia para detectar y localizar con precisión cada ARNm objetivo en una imagen de microscopía fluorescente de campo amplio. Las sondas que no se unen a la secuencia deseada no logran una fluorescencia localizada suficiente para distinguirse del fondo. [13]

Los ensayos FISH de ARN de molécula única se pueden realizar en simplex o multiplex, y se pueden usar como un experimento de seguimiento de la PCR cuantitativa, o se pueden obtener imágenes simultáneamente con un ensayo de anticuerpos fluorescentes. La tecnología tiene aplicaciones potenciales en el diagnóstico del cáncer, [14] neurociencia, análisis de expresión génica [15] y diagnósticos complementarios.

Fibra FISH Editar

En una técnica alternativa a las preparaciones en interfase o metafase, la fibra FISH, los cromosomas en interfase se unen a un portaobjetos de tal manera que se estiran en línea recta, en lugar de estar enrollados con fuerza, como en el FISH convencional, o adoptando un territorio cromosómico. conformación, como en la interfase FISH. Esto se logra aplicando cizallamiento mecánico a lo largo del portaobjetos, ya sea a las células que se han fijado al portaobjetos y luego se han lisado, o a una solución de ADN purificado. Una técnica conocida como peinado de cromosomas se utiliza cada vez más para este propósito. La conformación extendida de los cromosomas permite una resolución dramáticamente más alta, incluso hasta unas pocas kilobases. La preparación de muestras de fibra FISH, aunque conceptualmente simple, es una técnica bastante hábil, y solo los laboratorios especializados usan la técnica de manera rutinaria. [dieciséis]

Q-FISH Editar

Q-FISH combina FISH con PNA y software de computadora para cuantificar la intensidad de la fluorescencia. Esta técnica se utiliza de forma rutinaria en la investigación de la longitud de los telómeros.

Flow-FISH Editar

Flow-FISH usa citometría de flujo para realizar FISH automáticamente usando mediciones de fluorescencia por celda.

MA-FISH Editar

FISH asistido por microfluidos (MA-FISH) utiliza un flujo de microfluidos para aumentar la eficiencia de la hibridación del ADN, disminuyendo el costoso consumo de la sonda FISH y reduciendo el tiempo de hibridación. MA-FISH se aplica para detectar el HER2 gen en tejidos de cáncer de mama. [17]

MAR-FISH Editar

La microautorradiografía FISH es una técnica para combinar sustratos radiomarcados con FISH convencional para detectar grupos filogenéticos y actividades metabólicas simultáneamente. [18]

Fusión híbrida-FISH Editar

Hybrid Fusion FISH (HF-FISH) utiliza una combinación de excitación / emisión aditiva primaria de fluoróforos para generar espectros adicionales a través de un proceso de etiquetado conocido como transmisión óptica dinámica (DOT). Tres fluoróforos primarios son capaces de generar un total de 7 espectros de emisión fácilmente detectables como resultado del marcado combinatorio usando DOT. Hybrid Fusion FISH permite aplicaciones FISH altamente multiplexadas que están dirigidas dentro de los paneles de oncología clínica. La tecnología ofrece una puntuación más rápida con conjuntos de sondas eficientes que se pueden detectar fácilmente con microscopios fluorescentes tradicionales.

A menudo, los padres de niños con una discapacidad del desarrollo quieren saber más sobre las condiciones de su hijo antes de elegir tener otro hijo. Estas preocupaciones se pueden abordar mediante el análisis del ADN de los padres y del niño. En los casos en que no se comprenda la discapacidad del desarrollo del niño, la causa de la misma se puede determinar potencialmente utilizando FISH y técnicas citogenéticas. Los ejemplos de enfermedades que se diagnostican mediante FISH incluyen el síndrome de Prader-Willi, el síndrome de Angelman, el síndrome de deleción 22q13, la leucemia mielógena crónica, la leucemia linfoblástica aguda, Cri-du-chat, síndrome velocardiofacial y síndrome de Down. FISH en espermatozoides está indicado para hombres con un cariotipo somático o meiótico anormal, así como para aquellos con oligozoospermia, ya que aproximadamente el 50% de los hombres oligozoospérmicos tienen una tasa aumentada de anomalías cromosómicas de los espermatozoides. [19] El análisis de los cromosomas 21, X e Y es suficiente para identificar a los individuos oligozoospérmicos en riesgo. [19]

En medicina, FISH se puede utilizar para formar un diagnóstico, evaluar el pronóstico o evaluar la remisión de una enfermedad, como el cáncer. Luego, el tratamiento se puede adaptar específicamente. Un examen tradicional que involucra el análisis de cromosomas en metafase a menudo no puede identificar características que distinguen una enfermedad de otra, debido a características cromosómicas sutiles, FISH puede dilucidar estas diferencias. FISH también se puede utilizar para detectar células enfermas más fácilmente que los métodos citogenéticos estándar, que requieren la división de células y requieren trabajo y preparación manual y análisis de los portaobjetos por parte de un técnico que requiere mucho tiempo. FISH, por otro lado, no requiere células vivas y se puede cuantificar automáticamente, una computadora cuenta los puntos fluorescentes presentes. Sin embargo, se requiere un técnico capacitado para distinguir diferencias sutiles en los patrones de bandas en los cromosomas en metafase doblados y retorcidos. FISH se puede incorporar en un dispositivo de microfluidos Lab-on-a-chip. Esta tecnología aún se encuentra en una etapa de desarrollo pero, al igual que otros métodos de laboratorio en un chip, puede conducir a técnicas de diagnóstico más portátiles. [20] [21]

Identificación de especies Editar

El FISH se ha estudiado ampliamente como técnica de diagnóstico para la identificación de patógenos en el campo de la microbiología médica. [22] Aunque se ha demostrado que es una técnica útil y aplicable, todavía no se aplica ampliamente en los laboratorios de diagnóstico. El corto tiempo hasta el diagnóstico (menos de 2 horas) ha sido una gran ventaja en comparación con la diferenciación bioquímica, pero esta ventaja es desafiada por MALDI-TOF-MS que permite la identificación de una gama más amplia de patógenos en comparación con las técnicas de diferenciación bioquímica. El uso de FISH con fines de diagnóstico ha encontrado su propósito cuando se necesita la identificación inmediata de especies, específicamente para la investigación de hemocultivos para los cuales FISH es una técnica barata y fácil para el diagnóstico rápido preliminar. [22]

FISH también se puede utilizar para comparar los genomas de dos especies biológicas, para deducir relaciones evolutivas. Una técnica de hibridación similar se llama zoo blot. Las sondas FISH bacterianas son a menudo cebadores para la región de ARNr 16s.

FISH se utiliza ampliamente en el campo de la ecología microbiana, para identificar microorganismos. Las biopelículas, por ejemplo, están compuestas por organizaciones bacterianas complejas (a menudo) de múltiples especies. La preparación de sondas de ADN para una especie y la realización de FISH con esta sonda permite visualizar la distribución de esta especie específica dentro de la biopelícula. La preparación de sondas (en dos colores diferentes) para dos especies permite a los investigadores visualizar / estudiar la co-localización de estas dos especies en la biopelícula y puede ser útil para determinar la arquitectura fina de la biopelícula.

Hibridación genómica comparativa Editar

La hibridación genómica comparativa se puede describir como un método que usa FISH de manera paralela con la comparación de la fuerza de hibridación para recordar cualquier interrupción importante en el proceso de duplicación de las secuencias de ADN en el genoma del núcleo. [23]

Cariotipo virtual Editar

El cariotipo virtual es otra alternativa rentable y clínicamente disponible a los paneles FISH que utilizan de miles a millones de sondas en una sola matriz para detectar cambios en el número de copias, en todo el genoma, con una resolución sin precedentes. Actualmente, este tipo de análisis solo detectará ganancias y pérdidas de material cromosómico y no detectará reordenamientos equilibrados, como translocaciones e inversiones, que son aberraciones características que se observan en muchos tipos de leucemia y linfoma.

Cariotipo espectral Editar

El cariotipo espectral es una imagen de cromosomas coloreados. El cariotipo espectral implica FISH utilizando múltiples formas de muchos tipos de sondas con el resultado de ver cada cromosoma marcado a través de su etapa de metafase. Este tipo de cariotipo se usa específicamente cuando se buscan arreglos cromosómicos.


Ningún grupo de peces ha conquistado el mar más que los teleósteos. Son los peces más avanzados de todos y dominan tanto en hábitats marinos como de agua dulce. Se encuentra una increíble diversidad de teleósteos en todo el mundo.

La vida en un río no siempre es fácil, pero los peces de río prosperan en las condiciones de flujo libre de los ríos debido a algunas adaptaciones clave.

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¡Este pez es genial!

13 4 9 9 & amp 20 Más

El buceador se encuentra con un "pez fantasmal" que es casi completamente transparente

No es un pez para que conste, sino un tunicado llamado salpa

Iba a decir, la notocorda está en el lado ventral.

Editar, es tan transparente que apenas puedo decirlo, pero creo que la notocorda está en el lado dorsal.

¿Alguien más notó que este video es de "The Sun", un conocido tabloide que también ha investigado adónde los extraterrestres llevaron a Elvis?

¿Tienen alguna información sobre dónde lo llevaron?

No es un pez, es un tunicado. No tiene cerebro. Es una cordada muy basal. Sistergroup a todos los vertebrados.

No es un atún, y no me llames Kate.

Cuando el plástico del mar empieza a cobrar vida.

¿Por qué usan sus propias manos?

El buceador sabe que cuando el pez muerde uno o dos dedos, podrá ver los dedos dentro del pez y no se perderán. Si le lleva el pescado y los dedos a un podólogo con la suficiente rapidez, podrán sujetar los dedos al pescado y luego aprobará el examen de matemáticas.


Comida para pez

Como otros animales, los peces necesitan alimento para crecer y sobrevivir. Los materiales que consume un pez para su crecimiento, reposición, producción de energía y reproducción se denominan alimento para peces. La comida juega un papel importante en la cría de peces. Comer una dieta equilibrada acelera el crecimiento de los peces y los peces alcanzan la madurez sexual a tiempo. Como resultado, las glándulas reproductoras de los peces están completamente desarrolladas y aumenta la producción de óvulos y esperma. Los peces necesitan mucha energía para varios procesos importantes de la vida, como la circulación sanguínea, el manejo respiratorio, el control de la hipertensión, la suspensión y la inmersión. Los peces obtienen esta energía al ingerir alimentos.

Tipos de comida para peces

Hay diferentes tipos de alimento para peces en el agua, como nutrientes disueltos y diferentes tipos de plantas y animales. Se desconocen los detalles sobre la ingesta directa de nutrientes, pero se ha descubierto que algunos peces absorben la glucosa directamente del agua. Hay muchos iones y constituyentes primarios y secundarios que se disuelven en agua y los peces los llevan al tracto digestivo directamente a través de las branquias o con los alimentos.

Algunos peces absorben iones de calcio a través del tubo digestivo para formar fibras y huesos. De manera similar, también se absorben algunos aminoácidos. Diferentes peces comen diferentes tipos de alimentos. Algunos peces solo comen material vegetal, mientras que algunos peces dependen de los animales para alimentarse. La mayoría de los peces toman proteínas, carbohidratos, grasas, vitaminas, etc., y otros ingredientes tanto de origen vegetal como animal para su crecimiento y bienestar.

Estos alimentos para peces provienen de dos fuentes principales, a saber:

(1) El medio ambiente en el que viven los peces, es decir, del medio acuático y

(2) Fuera del medio acuático, es decir, de la superficie terrestre de la tierra.

De acuerdo con esta diferencia en las fuentes de alimentos, la comida para peces se puede dividir principalmente en dos partes, a saber.

1. Alimentos naturales

El agua es el medio para mantener la vida de los peces. Los alimentos que se producen naturalmente en el agua de un depósito se denominan alimento natural para peces. El plancton, los insectos y plantas acuáticos, los pulgones, la materia orgánica del fondo de los estanques, etc. son alimentos naturales para los peces. Los alimentos naturales son la principal fuente de alimento para que los peces sobrevivan. La idoneidad de los alimentos naturales en un reservorio depende de la productividad inicial de ese reservorio.

Fuentes de alimentos naturales

Casi todos los organismos que se encuentran de forma natural en el agua, independientemente de que sean vegetales o animales, son fuentes de alimentos naturales. Los peces también consumen materia no viva en descomposición en el fondo del agua y en el lodo. Estos organismos en descomposición contienen una gran cantidad de bacterias y protozoos que son más nutritivos e importantes como alimento natural para los peces. Estos alimentos naturales de los peces interactúan principalmente entre sí en roles tales como cazadores y depredadores y compiten entre sí por comida, espacio, etc. Esta interacción de la materia orgánica se llama ciclo alimentario. El alimento natural de los peces en el cuerpo de agua se produce mediante el suministro de alimentos.

El alimento natural de los peces obtenidos en el medio acuático se puede dividir en las siguientes 6 categorías, a saber:

(A) Plancton: Los organismos animales y vegetales diminutos o microscópicos presentes en el agua se denominan plancton. El plancton no puede nadar contra las olas o las corrientes de agua. Flotan pasivamente al ritmo de corrientes u olas. El plancton es el principal alimento natural de los peces. La presencia de más plancton en el agua indica una mayor productividad del reservorio. El color del agua aparece verde o marrón indica exceso de plancton. El plancton se divide en plancton vegetal (fitoplancton) y plancton animal (zooplancton).

(B) Perifitón: Los perifiton son plantas y animales pequeños que se adhieren a las ramas de plantas acuáticas relativamente grandes con raíces o viven firmemente en un refugio sólido en la parte inferior.

(C) Nekton: Un animal acuático relativamente grande que puede nadar y moverse libremente se llama nectón. Los nectones pueden liberarse de quedar atrapados en redes de plancton, como el escarabajo de las ostras, los insectos acuáticos, etc.

(C) Neuston: Una criatura que nada o descansa sobre la superficie del agua o en un estado flotante se llama neuston, como los insectos.

(D) Bentos: Un organismo que vive en la superficie del lodo o en el lodo bajo el agua se llama bentos como caracoles, ostras, larvas de insectos, oligoquetos, etc.

(E) Macrófitos: Una planta acuática relativamente grande se llama macrófita como Pistia, Hydrilla, Najas, Ceratophyllum, Wolffia, Lemna etc.

2. Pienso complementario

Además de proporcionar alimentos naturales para una mayor producción, algunos alimentos provienen del exterior del embalse. Estos alimentos que se dan desde el exterior se denominan alimentos complementarios. La cáscara de arroz, el salvado de trigo, la torta de aceite de mostaza, el salvado de arroz, etc. son alimentos complementarios para el pescado.

Además de las categorías anteriores, la comida para peces también se puede clasificar de las siguientes formas, a saber:

(1) Alimento vegetal: Los alimentos que se obtienen de plantas o fuentes vegetales se denominan alimentos vegetales o vegetales, como el fitoplancton, Azola, Pistia, hierba verde, plantas acuáticas blandas, cáscara de arroz, cáscara de maíz, torta de aceite de mostaza, salvado de trigo, etc.

(2) Alimentos para animales: Los alimentos obtenidos de animales o de fuentes animales se denominan alimentos de origen animal, como zooplancton, pequeños insectos acuáticos, sangre de ganado, gusanos de seda, harinas de pescado, etc.

(3) Comida mixta: El alimento mezclado es el alimento elaborado mezclando alimentos de origen vegetal y animal o de ambas fuentes, como cáscara de arroz, sangre de ganado, materia orgánica podrida en el fondo del estanque, etc.

(5) Alimentos preparados: El alimento balanceado que se prepara mezclando diferentes ingredientes alimentarios se llama alimento preparado. Los alimentos se producen en forma de gránulos, pellets. Hay diferentes tipos de alimentos preparados disponibles en el mercado ahora. Tales como: iniciador, cultivador, etc.

Peces parásitos, especialmente lampreas marinas (Petromyzon marinus), se alimentan de sangre y fluidos tisulares de otros peces. Muchos peces pequeños comienzan a comer plancton mientras permanecen en el saco vitelino usando sus bocas pequeñas. Algunos peces, especialmente los Gizard Sads (Dorosoma), tienen una serie de branquiespinas largas y densamente pobladas, por lo que comen principalmente plancton durante toda su vida.

Los peces que tienen dientes cortantes, pellizcan partes de plantas como hojas, tallos, pasto, etc. (pez loro - Asaridae, pez cirujano - Acanthurus, tilapia de agua dulce - Oreochromis mossambicus y carpa herbívora - Ctenopharyngodon idella). En algunos casos, los peces toman partes del cuerpo como escamas, esqueletos, etc. como alimento de otros peces. Además, el bagre indio (Schibeidae) y los cíclidos africanos toman las escamas de otros como alimento (Lepidocaly). Además, la trucha (Salmo, Salvelinus) se puede ver comiendo pequeñas partes de las aletas de otros peces.

En las distintas especies de peces se producen diferentes dietas e ingestas de alimentos. Nikolsky (1983) dividió la comida para peces en cuatro categorías, a saber:

(1) Alimentos básicos: Los alimentos básicos son los alimentos que consume la mayoría de los peces. Por lo general, se incluye en la mayor parte de la dieta del pescado.

(2) Alimentos secundarios: A veces, los peces consumen pequeñas cantidades de alimentos que están relacionados con los elementos alimenticios básicos. Este alimento constituye el alimento secundario de los peces.

(3) Alimentos accidentales: Un ingrediente rara vez ingresa al tracto digestivo y forma dicho alimento.

(4) Alimentos obligatorios: Todos los alimentos que consumen los peces por insuficiencia de alimentos básicos en condiciones adversas se conocen como alimentos obligatorios.


Excreción en peces

Diferentes partes del cuerpo, especialmente el sistema excretor, están involucradas en la eliminación de los productos de desecho producidos por el metabolismo. El proceso de eliminar los desechos nitrogenados del cuerpo se llama excreción. El sistema subsidiario de la función excretora se conoce como sistema excretor. Estas sustancias excretoras se forman por la reacción de acumulación de aminoácidos. En el proceso de desaminación, el amino (- NH2) se separa del aminoácido. Algunos de estos subproductos son esenciales para el organismo, mientras que otros son innecesarios o dañinos. Las sustancias naturalmente innecesarias y nocivas deben eliminarse del cuerpo.

Dióxido de carbono (CO2) y agua (H2O) se producen en el cuerpo animal a través del proceso de oxidación y el metabolismo de las proteínas da como resultado la formación de productos de desecho nitrogenados como amoniaco, ácido úrico, purinas, etc. Aunque el dióxido de carbono y el agua son necesarios para controlar algunos procesos fisiológicos, estas sustancias son se consideran productos de desecho cuando se acumulan en grandes cantidades y deben eliminarse del cuerpo de vez en cuando.

En el caso de los vertebrados, la piel, los pulmones, el hígado y el tracto digestivo ayudan en la excreción, pero el órgano principal para esta función es el riñón. El sistema excretor de los vertebrados está formado por un par de riñones y algunos órganos adyacentes. Este sistema es casi el mismo en todos los vertebrados. Aunque los riñones de todos los vertebrados están particularmente acostumbrados a la eliminación de desechos nitrogenados, no todos los animales tienen los mismos órganos.

El riñón de los vertebrados se divide en pronefros, mesonefros y metanefros según la condición de nefros en animales maduros. Aunque el pronefros se encuentra en todos los vertebrados en estado embrionario, solo en algunos animales como Bellostoma, Myxine, etc., es un riñón eficaz en la edad adulta. Sin embargo, estos riñones también se encuentran en los embriones de reptiles, aves y mamíferos. Los peces tienen riñones de tipo mesonéfrico.

Los animales acuáticos no tienen problemas para eliminar el amoníaco. Por eso se les llama animales amnotéticos. Los organismos amnotélicos incluyen crustáceos, poliquetos, teleósteos, larvas de renacuajos de anfibios, etc.

Hay algunos animales que viven en el agua durante algún tiempo y en la tierra durante algún tiempo. Convierten el amoníaco tóxico en el hígado en amoníaco menos tóxico y luego en urea. Urea stays in the body longer than ammonia. Animals whose main excretory substance is urea are called ureotelic animals. Animals such as elasmobranch, amphibians and mammals are ureotelic animals.

Terrestrial animals are not able to remove water from their bodies due to low water content. In this case, the nitrogenous waste material is converted to a less toxic substance called uric acid. It is removed from the body in the form of crystals. Animals whose main excretory substance is uric acid are called ureotelic animals. Insects, gastropods, lizards, snakes and birds are among the ureotelic animals. Because the excretory and reproductive organs of the fish are very close together, so these two systems are collectively called the urinogenital system. However, excretion and reproductive system work separately.

Excretory Products in Fishes

The excretory substances produced by fish are ammonia, urea, uric acid, creatine, creatinine, amino acids and trimethyl amine oxide (especially marine fish). The kidneys, liver, gills and other tissues play an important role in the production and removal of these excretory substances. Protein foods are the main source of nitrogen. Ammonia production from proteins is shown through the following reactions:

Freshwater and saltwater fish`s urine contains very little nitrogen. However, freshwater fish urine contains less nitrogen than salt water. Most of the nitrogen is removed as ammonia through the gills. Highly permeable elements such as urea, amine or amine oxide are removed by the gills, but less permeable nitrogenous elements such as creatine, creatinine and uric acid are mainly removed by the kidneys. The following is a detailed description of ammonia, urea and trimethyl amine oxide:

Ammonia

Ammonia is the main component produced from nitrogen metabolism. It is a toxic substance formed by the deamination reaction of amino acids. No energy is required to make ammonia from proteins. The process of deamination produces free energy from glutamate. The reaction of glutamic acid dehydrogenase(enzyme) with the transamination system plays an important role in ATP production. NAD + or NADP + is required for glutamic acid dehydrogenase. When the amount of NAD + or NADP + decreases, they enter the oxidative phosphorylation chain.

Because ammonia is soluble in fat, it can spread without losing water. Ammonium (NH4 + ) is instantly converted to ammonia (NH3). The exchange efficiency of NH4 + with sodium absorption through freshwater fish gills has been known. The exchange of NH4 + and Na + plays two roles, namely, the removal of nitrogenous wastes and the support of Na + storage. Very small amounts of ammonia are removed through the kidneys.

Studies by Braunstein (1939), Braunstein and Byechkov (1939) have shown that the main process of making ammonia is the deamination of amino acids through the transaminase system. In carp and other freshwater teleosts, gills act as sources of ammonia (Zydowo 1960, Makarewicz and Zydowo 1962). High activity of adenosine monophosphate amino hydrolase can be observed in the tissues of gills. At first, it is partially involved in the ‍aminatiion of inosine monophosphate in the process of producing aspartate salts from aspartic acid. At the next step deamination of adenosine monophosphate occurs through AMP deaminase as shown in the following flow diagram:

Urea is a nitrogenous compound that is less toxic. It is more soluble in water than ammonia. It is produced from ammonia and carbon dioxide through complex ornithine cycles. It has been found in the blood of marine coelocanth (Latimaria chalumnae) which is probably produced in the liver through the ornithine-urea cycle. However, in the case of teleost, there is disagreement as to whether urea is produced through the ornithine-citrulline-arginine cycle.

Brown and Cohen (1960) failed to detect two enzymes called carbamyl phosphate synthetase and ornithine transcarbamylase in the liver of teleost. These two enzymes are involved in the first two stages of the ornithine cycle. Therefore urea is not produced in the liver of teleost through the ornithine cycle.

Purine is thought to be one of the main sources of urea in fish. Several researchers (Przylecki 1925, Stansky 1933, Brunel 1937) have found evidence of the presence of urate oxidase, allantoinase, and allantoicase in the breakdown of uric acid in the liver of many teleosts. It is considered that urea is produced through a three-step process which is given below:

Trimethyleamine Oxide (TMAO)

It is a mild alkaline non-toxic component producing from nitrogen metabolism. It is found in the blood and body fluids of fish, especially marine fish. It has an osmotic regulating role with urea. Freshwater teleosts contain trimethyl amine oxide at a much lower concentration than marine teleosts. Decreases in the concentration of trimethyl amine oxide have been observed in euryhaline fish, especially in salmon fish (Salmo salar). The amount of trimethyl amine oxide is increased in the tissues of marine phase of euryhaline fish.

Excretion in Fishes

Excretion and secretion control are closely related and in fish it is done through the gills and kidneys. Although gills are the main respiratory organ, they also act as an important excretory and osmoregulatory organs. The kidneys play an important role in removing nitrogenous wastes and maintaining water-salt balance (homeostasis). A kidney has numerous large ducts or nephrons that develop from front to back.

The ducts of the anterior region develop and form pronephroses which are active in the early stages of life. Most of the ducts in the posterior region develop and form mesonephros which become functional in later life. The ancestor of the craniates probably had a set of segmental ducts in the trunk region that formed into the archionephros and opened into an archionepric duct. Archionephros later became distinct and produced Pro, Meso, and Metanephros.

In fish, a functional pronephros is seen which is subsequently replaced by a mesonephric duct. These are exposed to the pronephric duct and later turn into the mesonephric duct. Many ducts in the anterior region of the mesonephros become narrowed and even extinct to form a lymphoid organ. In fish and amphibians, most of the posterior ducts are located behind the pronephros, so their kidneys are called ophisthonephros.

Structure of Kidney of Fishes

Kidneys are two in number with elongated structure. They are located above the alimentary canal and adjacent to the vertebral column. The kidney of teleost is usually divided into two parts, namely the head kidney and the trunk kidney. However, in many species, these areas cannot be separated from the outside. There is no definite difference in the shape of the kidney based on sexes. The kidneys of marine teleost can be divided into following five parts:

Type-1: In this case, the two kidneys are completely integrated. There is no difference between head kidney and trunk kidney. It can be observed in fish of the order Clupeiformes.

Type-2: In this case, the middle and posterior part of the kidney is integrated. There is a clear difference between the head kidney and the trunk kidney. It is found in marine catfish (Plotosidae) and eel (Anguillidae).

Type-3: In this case, only the posterior part of the kidney is integrated. The apex has two narrow branches. The head and trunk kidneys can be clearly identified. It is found in most marine fish of the family Belonidae, Scopelidae, Mugilidae, Scombridae, Carangidae, Cottidae and Pleuronectidae.

Type-4: In this case, the posterior end of the kidney is united. The head and trunk kidneys cannot be separated. Such kidneys are found in sea horse and pipe fish of the family Syngnathidae.

Type-5: In this case, the two kidneys are completely separate. Such kidneys are found in fish of the family Lophiidae.

The first three types of kidneys exist in freshwater teleosts. The fully integrated 1st type of kidney is found in Salmon and Trout of the family Salmonidae. The second type of kidney is found in fish (carp) of the family Cyprinidae. In this case, the middle and posterior part of the kidney are integrated. The free segment of the apex forms the head kidney and the integral part forms the trunk kidney.

In many species, the middle part of the trunk kidney is broad and the posterior part is gradually narrower. Such kidneys are found in Cirrhinus, Labeo y Puntius. The third type of kidney is found in many species under the family Cyprinodontidae, Gasterostidae and Cottidae. In this case, only the back part is united. Some fish such as Mystus, Amiurus y Dactylopterus have such kidneys. In this case, the head kidney is completely separated from the rest of the kidney.

The kidney usually has two mesonephric ducts and each crosses along the outer border of the corresponding kidney and is most clearly seen in the middle and posterior region of the kidney. The two ducts always meet to form a common duct. Such connections occur at the posterior end of the kidney (Mystus) or at a few points between the kidney and the urinary papilla. Before entering the urinary bladder, the two ducts remain separate (Labeo, Cirhhinus).

The common mesonephric duct may enlarge to form the urinary bladder, or it may have a specific sac-like structure on one side of the common mesonefric duct (Puntius). In male fish, the urinary bladder is usually exposed through a normal urinogenital opening and in females it is exposed through a separate urethral opening. The urinogenital opening of the male fish is located at the tip of a papilla.

Urethral opening and genital pores usually exist on the outside but in some species, a small cutaneous cloaca is formed and it is exposed in the ducts. Some species have a pair of abdominal pores on either side of the genital pore. Abdominal pore is a special type of opening that is exposed outside the coelom and the significance of these openings is not known.

Histology of Kidney

Histologically, the trunk kidney consists of numerous nephrons. Each nephron consists of a renal corpuscle or malpighian body and ducts, and their interductal space is filled with unevenly expanded lymphoid tissue. The head kidney is composed of lymphoid, hematopoietic, intrarenal and chromafin tissues (suprarenal) and does not contain renal corpuscles and ducts.

In some species, the lymphoid tissue of the head kidney has a small number of nephrons and collecting ducts. However, glomeruli and renal corpuscles are not usually present. The head kidney has no excretory role. It originates from the pronephric hematopoietic tissue, but in some teleosts, the mesonephros form the frontal growth of the head kidney. Renal material is found in the head kidneys in some teleosts. These look like of masonephric type.

In a freshwater teleosts, a typical nephron consists of the following parts:

(A) A renal corpuscles exists with well-developed blood vessels-rich glomerulus.

(B) A ciliary region of varying lengths which connects the renal corpuscle to the duct.

(C) There is an initial proximal segment with advanced brushborders and numerous lysosomes.

(D) A second proximal segment with rich in numerous mitochondria, exists with a weakly developed brush border.

(E) A narrow ciliated secondary segment exists which is absent in some species.

(F) A distal segment exists consisting of relatively clear cells and long mitochondria.

(G) A collecting duct system exists.

A typical nephron of marine glomerular teleost consists of the following parts, viz

(A) Renal corpuscles with glomeruli

(B) A very short cervical segment

(D) A secondary segment which lies between the 1st and 2nd proximal segments.

(E) Collecting tubule (marine fish does not contain distal segment) and

Marine pleuronectids contain euryaheline glomerular nephron which consists of the following components, viz.

(A) Tiny glomerulus with weak blood vessels

(B) Neck or cervical segment with cilia

(F) A collecting duct system

Also in dipnoid (lung fish) nephrons consist of the following parts, viz

(A) A renal corpuscles consisting of a glomerular rich blood vessels.

(B) A ciliary neck or cervical region

(C) 1st segment of proximal duct that contains small particles like lysosomes

(D) 2nd segment of the proximal duct

(E) Ciliary secondary segment

(G) A collecting duct system

Modification of Kidneys in Fishes

In some teleosts, small glomeruli are seen in the kidneys. Myxocephalus has a low number of glomeruli wtith poorly developed blood vessels. Others, on the other hand, have a very small number of glomeruli (Lophius) and in the mature stage, the glomeruli become ineffective due to disconnection between the glomeruli and the renal tubules. After all, some marine fish (Toad fish-Opsanus), including the Antarctic bony fish, have no glomeruli.

Renal corpuscles are numerous in freshwater fish, usually round in shape, and each contains advanced blood vessels rich glomerulus. The number, size, and shape of the renal corpuscles vary widely in marine fish. Renal corpuscles rich in large and well-developed blood vessels are rarely seen. The kidneys of many marine fish usually have poorly developed glomeruli, which are rich in very few blood vessels and are probably ineffective (Therapon jarbua, Arius, Myxocephalus). These fish may have a small number of medium-sized glomerulus as well as smaller glomerulus.

In some species, there is a central ductless part(Chirocentrus, Tricanthus, Myxocephalus) surrounded by capillary loops. A significant number of marine fish (Porichthys notatuy, Hippocampus y Syngnathus) have completely ‍absent glomerular kidneys.

Lamprey larvae (Petromizonidae) have functional pronephric kidney until they are 12-15 mm long. They have a funnel in the nephrostome that is exposed to the pericardial coelom. The ionic equilibrium control technique of the developing gills and the permeability of the body fluids are determined on the basis of the penetration of the body fluids. Coelomic fluid travels through the glomeruli to the nephrostome.

The glomus is the circulatory component of the pronephric duct that reabsorbs to preserve the blood component and the remaining purified fluid goes to the urino-genital sinuses. During larval development, the openings of the pronephric kidney become extinct in the coelom and mesonephric kidney develops there. Arterial blood filtrates through the glomeruli without any selective reabsorption. Later, salts and other elements are reabsorbed in the convoluted duct.

With some exceptions, such as boffin (Amia) and Gar (Lepisosteus), the nephrostomy opening goes to the anterior coelom. In the mature freshwater ray finned fish, coelom does not connect with the mesonephric kidney. Here excess water circulates from the blood through the glomerulus and salts and sugars are reabsorbed by the epithelium of the renal tubules and enter the bloodstream through the capillaries. A typical freshwater ray finned fish (Actinopterygian) has numerous glomeruli. These are larger than the glomeruli of standard marine ray finned fish and their blood supply is well-developed.

As the kidneys of freshwater fish are larger than the body weight of marine fish, more water flows through this organ. Some freshwater fish species have more than 10,000 glomeruli in a kidney. In contrast, true marine fish have far fewer glomeruli. The salinity of the environment is related to this feature, as marine fish have much lower glomeruli than freshwater salmon (Onchorhynchus) of the same age. Moreover, differences in the diameter of the glomerulius are also observed. Some freshwater fish have a diameter of glomeruus of 47-104 microns (average 71 microns). On the other hand, in some marine fish it is 26-94 microns (average 48 microns).

The fish's kidneys receive dual blood supply through the renal arteries and portal veins. When the renal arteries send blood to the glomeruli, high blood pressure in the arteries helps to make glomerular filtrate. The renal portal vein connects to the capillary reticulum and surrounds the renal canal. Blood enters the glomeruli from the capillary blood vessels through the renal portal vein. All blood leaves the renal region through post-cardinal veins, but renal portal circulation is absent in lamprey and hagfish (Cyclostomata).

Excretory Process in Fishes

Vertebrates excrete nitrogenous wastes from the body through the intestines and skin. However, most metabolic wastes are excreted through specialized excretory organs. The glomerulus and bowman capsules act together as ultrafiltration and here the blood is filtered at high pressure. Under the influence of the overall filtration pressure, excretion of fluid flows through the renal ducts as a result of the movement of the long cilia of the neck segment and the cilia of other segment. Most of the sodium (Na + ) and chloride (Cl - ) ions are completely reabsorbed from over-filtration. Most of the glucose is removed by the same process.

In freshwater fish, the kidneys play an important excretory role in removing secondary nitrogenous compounds such as creatine and uric acid from the body, but the gills are the main organ through which major nitrogenous wastes such as ammonia (NH3) and urea are removed from the body. The magnesium (Mg ++ ) and sulfate (SO4 -- ) that enter the intestines of marine fish from water are removed by the kidneys. Other ions such as sodium (Na + ), chloride (Cl - ), potassium (K + ) and calcium (Ca ++ ) ions are also removed. Freshwater teleosts have more urine flow than marine fish. The process of filtration and reabsorption is regulated by different types of hormones.

Urine of freshwater fish have creatine, creatinine and unknown nitrogen compounds that contain some amino acids, a little urea and ammonia. The amount of nitrogen in the urine of freshwater fish is 2-25%. Fish gills emit large amounts of ammonia, and in the case of Cyprinus, it is 56%. The remaining nitrogenous substances are urea and other simple nitrogenous compounds are also excreted through the gills.

The amount of urine in fish depends entirely on the penetration of water into the body surface, gills and oral membranes. Not all fish have the same amount of impermeable mucus. Water circulates 20 times faster in the lamprey (Lampetra) than in the eel (Anguilla), and twice as fast in the body of goldfish (Carassius).

Freshwater fish produce large amounts of urine with a much lower concentration than body fluids. Lamprey produces 15-35% urine of her body weight every day. In freshwater bony fish (osteichthyes), on the other hand, it is account for 5-12%. In the case of freshwater fish, the freezing point of urine is approximately 0.025 0 C but higher levels are rare. However, in the African lung fish (Protopterus) its value has been recorded at 0.09 0 C.

The main function of kidneys of freshwater fish is to secrete water and some nitrogenous compounds. The kidneys also reabsorb sugar and other essential dissolved substances. The body of freshwater fish loses some of the salts that are hypertonic than the surrounding liquid, which is replenished through selective reabsorption through gills.

The multifaceted diffusion of matter from the body of the fish depends on the ratio of the surface of the body to the gills. Small fish with high metabolic demand have larger gill surface area than large fish. Differences in gill surface and body surface are also seen in fish of the same species. The size of the gill surface is very small than the body surface in the lamprey. The composition of urine indirectly depends on the temperature in addition to the amount of water taken through the gills and mouth.

Lamprey (Petromyzon) produces 60 ml of urine per kg body weight daily at a temperature of 20-30 ০ C. On the other hand, at a temperature of 18 0 C, 500 ml / kg of urine is produced daily. This rate of urine production fluctuates between 8-50% of body weight. Freshwater bony fish rarely produce more than 20% of urine by body weight daily, and in terrestrial mammals this amount is 1-5%.

In some freshwater bony fish, invagination is sometimes formed behind the mesonephric duct to preserve urine, called the urinary bladder. Some salts in fish, especially chloride, are removed through urine and mucus. In addition, the gills and mouth lose about the same amount of chloride as other parts of the body. The rate of total chloride loss through urine also varies from fish to fish.

In Lamprey (Petromyzon) and some Salmoninae fish, this ratio is 1: 100, on the other hand, in Cyprinus, it is 1: 35. However, the chlorine filtered in carp is again reabsorbed in the renal ducts. The total amount of chloride lost varies at a significant rate, such as Lamprey (Petromyzon) loses 7 times more chloride than carp (Cyprinus sp).


Gnathostomes: Jawed Fishes

Gnathostomes, jawed vertebrates, can be divided into two types of fish: Chondrichthyes (cartilaginous fish) or Osteichthyes (bony fish).

Objetivos de aprendizaje

Differentiate among the types of jawed fishes

Conclusiones clave

Puntos clave

  • Early jawed fish (gnathostomes) were able to exploit new nutrient sources because of their jaws and paired fins.
  • Chondrichthyes includes all jawed fish with cartilagenous skeletons, such as sharks, rays, skates, and chimaeras.
  • Osteichthyes includes all jawed fish with ossified (bony) skeletons this includes the majority of modern fish.
  • Osteichthyes can be further separated into Actinopterygii (the ray-finned fishes) and Sarcopterygii (lobe-finned fishes).
  • The majority of modern fish species are actinopterygii, from trout to clownfish.
  • Early Sarcopterygii (lobe-finned fishes) evolved into modern tetrapods, including reptiles, amphibians, birds, and mammals.

Términos clave

  • ossified: composed of bone, which is a calcium phosphate matrix created by special cells called osteoblasts
  • operculum: a covering flap or lidlike structure in plants and animals, such as a gill cover
  • Chondrichthyes: a taxonomic class within the subphylum Vertebrata: the cartilaginous fish
  • Osteichthyes: a taxonomic class within the subphylum vertebrata: the bony fish

Gnathostomes: Jawed Fishes

Gnathostomes or “jaw-mouths” are vertebrates that possess jaws. One of the most significant developments in early vertebrate evolution was the development of the jaw, which is a hinged structure attached to the cranium that allows an animal to grasp and tear its food. The evolution of jaws allowed early gnathostomes to exploit food resources that were unavailable to the jawless animals. In early evolutionary history, there were gnathostomes (jawed fishes) and agnathans (jawless fishes). Gnathostomes later evolved into all tetrapods (animals with four limbs) including amphibians, birds, and mammals.

Early gnathostomes were jawed fishes that possessed two sets of paired fins, which increased their ability to maneuver accurately. These paired fins were pectoral fins, located on the anterior body, and pelvic fins, on the posterior. The evolution of the jaw combined with paired fins permitted gnathostomes to expand from the sedentary suspension feeding of jawless fishes and become mobile predators. The gnathostomes’ ability to exploit new nutrient sources led to their evolutionary success during the Devonian period. Two early groups of gnathostomes were the acanthodians and placoderms, which arose in the late Silurian period and are now extinct. Most modern gnathostomes belong to the clades Chondrichthyes and Osteichthyes.

Placoderms: Dunkleosteous was an enormous placoderm from the Devonian period, 380–360 million years ago. It measured up to 10 meters in length and weighed up to 3.6 tons. As gnathostomes, they were more mobile and could exploit more food resources than the agnathostomes.

Chondrichthyes: Cartilaginous Fishes

The clade Chondrichthyes consists of sharks, rays, and skates, together with sawfishes and a few dozen species of fishes called chimaeras, or “ghost,” sharks. Chondrichthyes are jawed fishes that possess paired fins and a skeleton made of cartilage. This clade arose approximately 370 million years ago in the early or middle Devonian.

Hammerhead shark: Hammerhead sharks tend to school during the day and hunt prey at night. As members of Chondrichthyes, their skeletons are composed of cartilage.

Most cartilaginous fishes live in marine habitats, although a few species live in fresh water for part or all of their lives. Most sharks are carnivores that feed on live prey, either swallowing it whole or using their jaws and teeth to tear it into smaller pieces. Shark teeth probably evolved from the jagged scales that cover their skin called placoid scales. Some species of sharks and rays are suspension feeders that feed on plankton.

Sharks have well-developed sense organs that aid them in locating prey, including a keen sense of smell and electroreception. Organs called ampullae of Lorenzini enable sharks to detect the electromagnetic fields that are produced by all living things, including their prey. Only aquatic or amphibious animals possess electroreception. Sharks, together with most fishes and aquatic and larval amphibians, also have a sense organ called the lateral line, which is used to detect movement and vibration in the surrounding water. It is often considered homologous to “hearing” in terrestrial vertebrates. The lateral line is visible as a darker stripe that runs along the length of a fish’s body.

Rays and skates comprise more than 500 species and are closely related to sharks. They can be distinguished from sharks by their flattened bodies, pectoral fins that are enlarged and fused to the head, and gill slits on their ventral surface. Like sharks, rays and skates have a cartilaginous skeleton. Most species are marine and live on the sea floor, with nearly a worldwide distribution.

Osteichthyes: Bony Fishes

Members of the clade Osteichthyes, also called bony fish, are characterized by a bony skeleton. The vast majority of present-day fish belong to this group, which consists of approximately 30,000 species, making it the largest class of vertebrates in existence today.

Nearly all bony fish have an ossified skeleton with specialized bone cells (osteocytes) that produce and maintain a calcium phosphate matrix. A few groups of Osteichthyes, such as sturgeons and paddlefish, have primarily cartilaginous skeletons, but retain some bony elements. The skin of bony fish is often covered by overlapping scales. Skin glands secrete mucus that reduces drag when swimming and aids the fish in osmoregulation. Like sharks, bony fish have a lateral line system that detects vibrations in water. All bony fish use gills for gas exchange. Water is drawn over gills that are located in chambers covered and ventilated by a protective, muscular flap called the operculum. Many bony fish also have a swim bladder, a gas-filled organ that helps to control the buoyancy of the fish.

Bony fish are further divided into two extant clades: Actinopterygii (ray-finned fish) and Sarcopterygii (lobe-finned fish). Actinopterygii, the ray-finned fish include many familiar fish, such as tuna, bass, trout, and salmon, among others. Ray-finned fish are named for their fins that are webs of skin supported by bony spines called rays. In contrast, the fins of Sarcopterygii are fleshy and lobed, supported by bone. Although most members of this clade are extinct, living members include the less-familiar lungfishes and coelacanths. Early Sarcopterygii evolved into modern tetrapods, including reptiles, amphibians, birds, and mammals.

Actinopterygii and Sarcopterygii: The (a) sockeye salmon (Actinopterygii) and (b) coelacanth (Sarcopterygii) are both bony fishes of the Osteichthyes clade. The coelacanth, sometimes called a lobe-finned fish, was thought to have gone extinct in the Late Cretaceous period, 100 million years ago, until one was discovered in 1938 near the Comoros Islands between Africa and Madagascar.


A biology class that tested nine different samples of fish sold in sushi restaurants and grocery stores in southwestern Ontario was shocked to learn seven of the samples were mislabelled as different species of fish.

Even worse, one of the samples included a tiny louse that feeds on human skin.

The alarming discovery was made last week by a molecular biology class led by Jennifer McDonald, a professor at Fanshawe College in London, Ont.

“I knew about fish fraud as existing, but I wasn’t aware of just how big of a problem it really is,” McDonald told CTVNews.ca on Friday. “Maybe we need to be more demanding of tighter regulations in our food so we really know what we are eating.”

The project began as a lesson in DNA barcoding. Students were tasked with picking up fish at sushi restaurants and grocery stores and bringing them to class. The samples were collected from across the region, including Mississauga, London and the Muskoka region, and sent to a lab at Western University.

McDonald suspected some mislabelling. A study released last summer by ocean advocacy group Oceana Canada found that 44 per cent of seafood tested in five different cities were mislabelled. Similar studies conducted on the east and west coasts found the odds of mislabelled fish at around 50-50.

“So I figured it might be a little bit higher than what they found there. But this much?” McDonald said.

Of the nine samples, seven were mislabelled. The results included:

  • Escolar, sometimes called “the laxative of the sea,” mislabelled as white tuna
  • Tilapia, a naturally white fish, mislabelled as red tuna, a red fish
  • Another tilapia sample mislabelled as red snapper
  • Salmon sold in a grocery store containing a body louse
  • Yellowfin tuna mislabelled as albacore tuna
  • Rainbow trout mislabelled as Atlantic salmon
  • Coho salmon mislabelled as rainbow trout
  • Atlantic cod mislabelled as Pacific cod

Several of those findings raised serious alarm bells. Escolar contains an oily, indigestible substance named gempylotoxin that can lead to diarrhea, nausea, vomiting, abdominal pain, and headache.

Eating escolar can also cause keriorrhoea, described as the “rectal passage of an oily yellow or orange substance” by the Canadian Food Inspection Agency. The CFIA says it “works to ensure that escolar is not misidentified or mislabelled when it is sold at the retail level.”

“It was just shocking to everybody,” McDonald said of the discovery.

WHITE FISH POTENTIALLY DYED RED

The fact that tilapia passed as red tuna was also concerning, considering the fact that tilapia is a white fish.

“There had to be some kind of colouring on it. Either it was from a natural source or artificial food colouring, I’m not sure,” McDonald said.

Then there was possibly the most disturbing discovery: a body louse found on a piece of salmon purchased in a grocery store. Body lice are about the size a sesame seed and are capable of passing along certain diseases. They survive by eating dead human skin.

McDonald suspects the louse may have landed on the salmon at some point in the supply chain.

“It is really surprising to find that. We hope that we’re not eating insects when we eat food,” she said.

The findings reflect a potential for very serious health concerns, especially for consumers with food-related allergies.

“We should be guaranteed that what we're seeing or what were told in a restaurant is what we’re actually being served,” McDonald said.

“And if we can’t guarantee that, as consumers, then how do we know we’re avoiding things we can’t eat in the first place?”

NEXT UP: CANNED TUNA, SCALLOPS

Despite the concerns, McDonald said she doesn’t blame sushi restaurants for mislabelled fish.

“I know at higher end sushi restaurants, they’re extremely talented at filleting fish,” she said. “At the average place that a student could afford to go -- probably not. They probably obtained the fish form their suppliers, deboned already, and it might’ve been sliced into serving style slices already … can they guarantee they know what they’re getting? I don’t think they can.”

The project was originally intended to be a fun, teachable moment for students. Moving forward, McDonald plans to test more types of fish and seafood, including canned tuna and scallops.

The professor shared the results of the experiment on Twitter in a thread expressing her shock and disgust. The thread has since been retweeted more than 6,000 times.

“I think it kind of reinforces this feeling everyone had,” McDonald said of the response, adding that many people shared stories of getting sick shortly after eating sushi.


Ver el vídeo: Este Pez Se Come Sólo a Los Que Son Más Grandes Que Él (Diciembre 2022).